A) 先用細胞計數(shù)板計數(shù)所制備的細胞懸液中的細胞數(shù)量,然后接種細胞。 B) 按比例依次用培養(yǎng)基等比稀釋成一個細胞濃度梯度,一般要做 3-5 個細胞濃度梯度,每組 3-6 個復孔。 C) 接種后培養(yǎng)至細胞貼壁,然后加 CCK-8 試劑培養(yǎng)一定時間后測定 OD 值,制作出一條以細胞數(shù)量為橫坐標(X軸),OD 值為縱坐標(Y軸)的標準曲線。根據(jù)此標準曲線可以測定出未知樣品的細胞數(shù)量(試用此標準曲線的前提是實驗的條件要一致,便于確定細胞的接種數(shù)量以及加入 CCK-8 后的培養(yǎng)時間)。
2. 細胞活性檢測
A) 在 96孔板中接種細胞懸液(100 μL/孔)。將培養(yǎng)板放在培養(yǎng)箱中預培養(yǎng)(在 37℃,5% CO2 的條件下)。
B) 向每孔加入 10 μL CCK-8 溶液(注意不要在孔中生成氣泡,它們會影響 OD 值的讀數(shù))。
A) 在 96 孔板中配置 100 μL 的細胞懸液。將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱預培養(yǎng) 24 小時(在 37 ℃,5% CO2 的條件下)。
B) 向培養(yǎng)板加入 10 μL 不同濃度的待測物質。在培養(yǎng)箱孵育一段適當?shù)臅r間(例如:6、12、24 或 48 小時)。
C) 向每孔加入 10 μL CCK-8 溶液(注意不要在孔中生成氣泡,它們會影響 OD 值的讀數(shù))。如果待測物質有氧化性或還原性的話,可在加 CCK-8 之前更換新鮮培養(yǎng)基(除去培養(yǎng)基,并用培養(yǎng)基洗滌細胞兩次,然后加入新的培養(yǎng)基),去掉藥物影響。